免疫学检测法

免疫学检测法的基本原理是细胞因子（或受体）与相应的特异性抗体（单克隆抗体或多克隆抗体）结合，通过同位素、荧光或酶等标记技术加以放大和显示，从而定性或定量显示细胞因子（或受体）的水平。这类方法的优点是实验周期短，少受抑制物或相似生物池功能因子的干扰，如抗体的特异性高可区分不同型或亚型的细胞因子（如IFN），一次能检测大量标本，易标准化。与生物学活性检测方法相比，免疫学检测法在许多情况下敏感性低于前者，所得结果不表示生物学活性，有的McAb只能识别重组的细胞因子，在检测天然的细胞因子中受到限制。

免疫学检测的方法多采用ELISA和RIA法，可以分为平心法、竞争法和间接法。

（一）ELISA（或RIA）平心法

根据抗体性质和特异性不同可有以下几种不同的平心法ILISA。

1.PcAb与McAb夹心法　用纯化的多克隆抗体（PcAb）包被板子，加待检细胞因子（或可溶性受体）和标准品，上层加酶标记的McAb。有时为了增加敏感性，上层加McAb后再用酶标记第二抗体显色。

2.McAb与PcAb夹心法　用McAb包被板子，加待检样品，上层加酶标记的PcAb。有时为了增加敏感性，上层加PcAb后再用钊对PcAb的酶标记抗抗体。

3.双McAb夹心法 选择和应用识别同一个细胞因子（或受体）分子上不同表位的两种McAb，其中一种包被板子，另一种McAb标记酶。由于单克隆抗体亲和力识别表位地匀一，从质量控制角度来看，一般比上两种夹心法易控制。如目前已商品化检测细胞因子（或其受体）的检测盒大多采用双单克隆抗体夹心法。

4.细胞、McAb夹心法 用表达IL-2R的MT-1细胞包被板子，加入待检IL-2或标准品，上层加¹²⁵I标记的McAb，根据γ计数cpm值推算出待检IL-2含量。

（二）竞争法

有报道用况争法检测IL-2水平。用免抗IL-2PcAb包袱板子，同时加入¹²⁵I标记的IL-2和待测IL-2，根据γ计数cpm值得知待检IL-2对¹²⁵I-IL-2与PcAb竞争结合的程度，从而推算出待测标本IL-2的含量。这种方法检测IL-2的敏感性可达50pg/ml。

为了增加敏感性，在上述系统中可再连接上生物素，再用链霉亲和素（streptavidin）酶标记物进行放大。此外，还可用化学发光、改进显色底物等措施提高检测方法的敏感性。

表4-23 细胞因子生物学活性与免疫学检测方法的比较

 

	生物学活性法	免疫学检测法
原理	细胞因子特定的	细胞因子与相应抗体
	生物学活性	特异性结合反应
结果表示	生物学活性水平	含　量
敏感性	一般较高	一般较低
	（与细胞表面高亲和力受体有关）	（加放大系统可明显升高）
特异性	低	高
（识别类型、亚型）	（不能）	（不可能）
周　期	较　长	短
受实验条件影响
培养条件	大	小
指示细胞敏感性差异	大	／
指示细胞突变	可发生	／
生物学作用相同因子干扰	大	小
样品中特异性或非特异性	大	小
抑制物干扰
重复性	较　差	较　好
标准化、大量检测	困　难	容　易